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        鴨源性成分Co1基因(Duck-Co1)熒光PCR試劑盒
        產品簡介

        鴨源性成分Co1基因(Duck-Co1)熒光PCR試劑盒針對鴨源性成分Co1基因高度保守區基因序列設計特異性引物和熒光探針。在反應體系中含鴨源性成分Co1基因組模板的情況下,PCR反應得以進行并釋放熒光信號。利用熒光定量PCR儀對PCR過程中相應通道的信號強度進行實時監測和輸出,實現檢測結果的定性、定量分析。

        產品型號:
        更新時間:2023-07-05
        廠商性質:生產廠家
        訪問量:1660
        詳細介紹在線留言

        鴨源性成分Co1基因(Duck-Co1)熒光PCR試劑盒說明書

        【產品名稱】

        通用名稱:鴨源性成分Co1基因(Duck-Co1)核酸檢測試劑盒(熒光-PCR 法)

        Name   :Duck-Co1 Gene (Duck-Co1) Nucleic Acid Detection Kit (Fluorescence-PCR)

        【包裝規格】48T/盒

        【預期用途】

        動物源性成分廣泛分布于食品、飼料、化妝品等,與人們的生活息息相關,其中食品和飼料所占的比例大。肉及肉制品摻假成為世界各國共同關注的熱點問題,肉食品及其飼料的安全隱患直接關系到人類的安危。近幾十年來,以PCR技術為核心的動物源性成分檢測獲得了廣泛應用。

        本試劑盒適用于動物組織以及食品、飼料等樣本中鴨源性成分Co1基因的檢測。

        【檢驗原理】

        本試劑盒對鴨源性成分Co1基因保守區設計特異性的引物和探針[1-3],用熒光 PCR 技術對核酸進行體外擴增檢測,從而達到快速檢測之目的。

        【試劑組成】

        名 稱 規 格

        酶液 50μL×1 管

        Chicken 反應液 1.0mL×1 管

        Chicken 陽性質控品 50μL ×1 管

        陰性質控品 250μL ×1 管

        注:

        1)不同批號試劑不能混用。

        2)試劑盒內各試劑組份足夠包裝規格所標示的檢測次數。

        【儲存條件及有效期】

        -20℃±5℃,避光保存、運輸、反復凍融次數不超過 5 次。有效期 12 個月。

        【適用儀器】

        ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、MJ Opticon2、LightCycler480、Bio-Rad、eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

        【標本采集】

        取動物組織及其制品、食品或飼料約 1g。

        【保存和運輸】

        上述標本短期內可保存于-20℃,長期保存可置-70℃。但不能超過6個月,標本運送應采用0℃。

        【使用方法】

        1.樣品處理(樣本處理區)

        1.1樣本前處理:

        取動物組織及其制品、食品或飼料約 1g,手術剪剪碎混勻后取 0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理鹽水后繼續研磨,待勻漿后轉至 1.5mL 滅菌離心管中, 8000rpm 離心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中。

        1.2DNA 提取

        DNA 的提取推薦采用上海晅科生物科技有限公司生產的DNA 提取試劑盒(離心柱提取法),請嚴格按照試劑盒說明書進行操作。

        2.試劑配制(試劑準備區)

        根據待檢測樣本總數,設所需要的 PCR 反應管管數為 N(N=樣本數+1 管陰性對照+1 管陽性對照;樣品每滿 7 份,多配制 1 份),每測試反應體系配制如下表:

        步驟 循環數 溫度 時間 收集熒光信號

        1 1 cycle 95℃ 10min 否

        2 40 cycles 94℃ 15sec 否

        55℃ 30sec 是

        5.結果分析判定

        5.1結果分析條件設定

        設置 Baseline 和 Threshold:一般直接按機器自動分析的結果分析,當曲線出現整體傾斜時,根據分析后圖像調節 Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內調節)、stop 值(一般可在 5~20 范圍內調節),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動閾值線至高于陰性對照),重新分析結果。

        5.2判斷

        a)檢測通道 Ct 值<30.0,有 FAM 熒光信號檢出,并出現明顯的擴增曲線,判斷樣品為陽性。

        b)當 30.0≤Ct 值≤35.0 時,且有明顯的擴增曲線時,則需重復實驗。再次擴增后檢測體系的Ct 值仍≤35.0,且有明顯的擴增曲線,則判定該樣品含有相應的動物源性成分。當再次擴增后,檢測體系 Ct 值>35.0,或無明顯的擴增曲線,則判定該樣品不含相應的動物源性成分。

        6.檢測方法的局限性

        1)樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關;

        2)樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現假陽性結果;

        3)陽性對照、擴增產物泄漏,會導致假陽性結果;

        4)病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結果;

        5)不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果;

        6)試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或   定量檢測不準確的結果;

        7)本檢測結果僅供參考,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。

        7.質控標準

        a)空白對照:無FAM 熒光信號檢出或 Ct 值≥35.0,未出現典型的擴增曲線。

        b)陰性對照:無FAM 熒光信號檢出或 Ct 值≥35.0,未出現典型的擴增曲線。

        c)陽性對照:有 FAM 熒光信號檢出,并出現典型的擴增曲線,Ct 值<30.0。

        d)以上應同時滿足,否則本次實驗無效。

        【注意事項】

        1)所有操作嚴格按照說明書進行;檢驗過程中,參照《GB/T 27403 實驗室質量控制規范 食品分子生物學檢測》的規定進行。

        2)試劑盒內各種組分使用前應自然融化,混勻并短暫離心;

        3)反應液應避光保存;

        4)反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;

        5)使用一次性吸頭、一次性手套和各區工作服;

        6)樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區進行,以免交叉污染;

        7)實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;

        8)試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫學實驗室生物安全   通則》進行處理。

        【參考文獻】

        [1]商務部. SB/T 10923-2012 肉及肉制品中動物源性成分的測定實時熒光 PCR 法[S]. 北京:中國標準出版社, 2012.

        [2]王琰. 兔源性食品的PCR-mtDNA 鑒別[J]. 山東師范大學, 2013.

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