使用細菌DNA/RNA提取試劑盒時樣本該如何處理

動物內臟、肌肉組織、血液以及培養的細胞和細菌等樣本在裂解液和蛋白酶K的作用下破碎并可使大部分蛋白質變性，釋放出基因組DNA。在其所提供的合適的鹽離子和pH環境的作用下，與乙醇混合后，基因組DNA特異性地結合于膜上，大部分蛋白質及其他雜質在兩次洗滌過程中被洗下，而DNA與膜結合牢固，在洗脫液的作用下被洗下。

樣本處理

（1）全血：

a）如果全血體積大于200μL，請先使用紅細胞裂解液或淋巴細胞分離液收集細胞，然后用200μL PBS緩沖液或生理鹽水充分重懸，進行步驟2。

b）如果樣本不足200μL，可以加入適量的PBS緩沖液或者生理鹽水補足200μL，進行步驟2。

c）從人血液中提取DNA的方法與從哺乳動物血液中提取DNA的方法相同。

d）從鳥類血液中提取的DNA需將不多于20μL血液樣本，加PBS緩沖液至200μL，混合后開始提取，進行步驟2。

（2）組織樣本：

每份組織分別從不同的三個位置稱取1g，用手術剪剪碎混勻后取約50mg置于研磨器中，加入0.5mL-1mL生理鹽水研磨，勻漿后轉入1.5mL滅菌的離心管，8000rpm離心2分鐘，取上清200μL加入1.5mL離心管，進行步驟2。

（3）培養的細胞：

懸浮細胞：細胞培養液3000rpm離心2分鐘，去上清，收集2×106個細胞（容積200μL），轉移至1.5mL離心管，進行步驟2。

貼壁細胞：去上清，收集2×106個細胞（容積200μL），轉移至1.5mL離心管，進行步驟2。

（4）其他液體樣本：

1000rpm離心2分鐘 ，棄上清，收集沉淀，進行步驟2。

（5）菌液：

培養的菌液，5000rpm離心1分鐘，棄上清，收集至少2×106個細菌，進行步驟2。